Por los contenidos de esta asignatura se trata de una disciplina compleja y densa en cuyo desarrollo se ha de tener extrema cautela para no caer en un desequilibrio entre las diferentes partes claramente diferenciadas que la integran. Teniendo en cuenta este planteamiento, los objetivos específicos que se pretenden conseguir son:

1. Comprender la organización de los organismos animales y vegetales según niveles estructurales de complejidad creciente.


2. Entender la célula como unidad y conocer las características estructurales y funcionales de los orgánulos de las células eucariotas y sus interrelaciones. Se trata de obtener una visión global de la célula y de la integración de las funciones que tienen lugar dentro de la misma.


3. Comprender el concepto de tejido y conocer las características de los distintos tejidos animales y vegetales, relacionando siempre estructura y función.


4. Conocer la estructura microscópica de los órganos, con el fin de comprender cómo la integración de diversos tejidos conlleva a la organización de unidades de orden superior capaces de desempeñar una función en el organismo.


5. Comprender que la asociación e integración de células en tejidos y órganos sirve para potenciar la propia actividad celular en un principio de colaboración y especialización.


6. Dominar la terminología básica en Citología y Histología para aprender a expresar los conceptos y describir correctamente las estructuras.


7. Aprender a utilizar el microscopio de prácticas.


8. Comprender y aplicar técnicas de preparación de muestras biológicas para su observación microscópica.

Propiciar el adiestramiento del estudiante en el análisis y diagnóstico de preparaciones y micrografías.

1. Manejo del microscopio óptico (m.o.). Observación de células aisladas en frotis de sangre. Observación de células en tejidos animales y vegetales (cerebelo de pollo y epidermis de lirio). (2 horas)


2. Observación de orgánulos celulares en micrografías de microscopía electrónica en células animales y vegetales. (2 horas)


3. Observación de microvellosidades y uniones entre células en preparaciones histológicas de intestino y riñón de mamífero. Observación de cilios en preparaciones histológicas de tráquea de mamífero. (2 horas)


4. Observación al m.o. de núcleos interfásicos en epitelios, conjuntivo y sistema nervioso. Observación de cromosomas mitóticos en raíz de cebolla. Observación de cromosomas politénicos en larvas de Drosophila. (2 horas)
   
5. Observación con m.o. de cloroplastos en hoja de hiedra y algas. Observación con m.o. de basofilia en preparaciones de hígado y páncreas de mamífero. (2 horas)


6. Observación de lisosomas en preparaciones histológicas de túbulos contorneados renales, hígado, neuronas, corteza suprarrenal y epitelio intestinal de mamíferos (tinciones H.E. y fosfatasa ácida de Gomori). Observación de inclusiones lipídicas, glucógeno y gránulos de pigmento al microscopio óptico. (2 horas)


7. Observación de la pared celular vegetal, plasmodesmos y punteaduras en preparaciones histológicas de tallo de dicotiledóneas y gimnospermas. (2 horas)


8. Estudio de las diferentes etapas de la meiosis en preparaciones histológicas de testículo humano y de anfibios. Ovogénesis en rata, y observación de diferentes estadíos del desarrollo folicular en ovario humano. (2 horas)


9. Observación de epitelios de revestimiento en piel humana, tráquea de rata, intestino y vejiga urinaria de conejo. Observación al m.o. de epitelios glandulares en tiroides, estómago, endometrio, mama y glándula salivar submaxilar de mamíferos. (2 horas)


10. Observación al m.o. de tejido conjuntivo en tendón y piel de anfibio. Fibras reticulares en hígado teñido con plata, fibras elásticas en aorta. Tejido adiposo de grasa blanca y grasa parda de mamífero. (2 horas)


11. Observación de cartílago en tráquea, oreja y articulación de hueso largo en rata. Estudio del hueso largo en secciones longitudinales y transversales. Estudio de un hueso plano y de un hueso largo de rata en osificación. (2 horas)


12. Observación de músculo liso en intestino de conejo y conducto deferente de ratón. Músculo estriado esquelético de lengua de conejo y cardíaco de mamífero. (2 horas)


13. Observación de neuronas en preparaciones histológicas de corteza cerebral, médula espinal, hipotálamo y cerebelo (tinciones H.E., Nissl, Golgi y luxol). Observación de astrocitos (tinción sublimado-cloruro de oro), oligodendrocitos (carbonato de plata) y microglía (carbonato de plata débil). (2 horas)


14. Observación al m.o. de fibras nerviosas mielínicas y amielínicas en corte transversal de nervio de sapo (Van Gieson) y longitudinal de nervio ciático de conejo (osmio). Observación de frotis de sangre humana y de pollo (Giemsa). Timo y ganglio linfático de mamífero. (2 horas)


15. Observación de preparaciones histológicas de aorta, arteria y vena pulmonar de rata. Observación de hipófisis y suprarrenal de mamífero. Comparación de tegumento de pez, reptil y humano. (2 horas)


16. Observación de branquias de carpa y pulmón de murciélago. Observación de esófago, estómago e intestino de mamífero. Observación de hígado y páncreas de cerdo. (2 horas)


17. Observación de riñón y uréter de ratón. Observación de testículo y epidídimo de ratón. Observación de ovario, útero y trompa uterina de mamífero. (2 horas)


18. Observación mediante tinción con orceína de meristemos radicales en la cebolla. Estudio del cambium vascular y felógeno en secciones tangenciales de tallo secundario de hiedra. Observación del parénquima, colénquima y esclerénquima en tallos de hiedra y lavanda, y en hojas de olivo y pino (tinciones fucsina ácida-verde yodo, hematoxilina-anilina, y safranina-fast green). (2 horas)


19. Observación de epidermis en tallo de lirio y junco. Estomas y tricomas en hoja de lirio, adelfa y salvia. Peridermis en tallo de higuera y raíz de pino. Observación de floema y xilema en tallo de lavanda, hiedra y pino, y en raíz de lirio y girasol (tinciones hematoxilina férrica-pardo Bismarck y hematoxilina-anilina). (2 horas)


20. Observación de cortes transversales de tallos primarios de hiedra y junco, y tallos secundarios de marrubio y pino. Cortes transversales de raíz primaria de girasol, y raíz secundaria de higuera y pino. (2 horas)


21. Observación de cortes transversales y longitudinales de hoja de olivo, lirio y pino. Estudio de la flor de lirio mediante secciones histológicas de androceo y gineceo. (2 horas)

TOTAL CRÉDITOS PRÁCTICOS: 4,5 / AREA DE BIOLOGÍA CELULAR

Lección magistral en clases teóricas con uso de pizarra y apoyo de imágenes en diapositivas, transparencias y otros medios audiovisuales. Intercalación de preguntas sobre la materia que se está explicando y sobre la relación que pueda tener con otras explicadas anteriormente.

La evaluación de la parte teórica de la asignatura será con un examen mixto que combine cuestiones concretas y preguntas tipo test. Se harán dos exámenes parciales de teoría, uno al final de cada cuatrimestre, exigiendo al alumno una nota mínima de 6 para liberar materia. Además se propondrán preguntas concretas sobre los seminarios que se han impartido a lo largo del curso cuya respuesta servirá para mejorar la nota.

Se hará un único examen de prácticas que tendrá lugar tras la finalización de dichas prácticas. Este examen también será un examen mixto en el que se combinarán la identificación de imágenes mostradas en diapositivas o fotografías con la descripción de preparaciones histológicas, de secciones animales y vegetales observadas por el alumno al microscopio óptico.

CITOLOGÍA E HISTOLOGÍA VEGETAL Y ANIMAL

• Paniagua R, Nistal M, Sesma P, Álvarez-Uría M, Fraile B. (2007). Citología e Histología Vegetal y Animal. Biología de las Células y Tejidos Animales y Vegetales. 4ª ed. McGrawHill/Intermaericana: Madrid


CITOLOGÍA

• Alberts B, Bray D, Johnson, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walters P. (2005). Introducción a la Biología Celular. 2ª ed. Omega: Barcelona
• Lodish H, Berk A, Zipursky SL, Matsudaira P, Baltimore D, Darnell J (2006). Biología Celular y Molecular. 5ª ed. Omega: Barcelona
• Fernández B, Bodega G, Suarez I, Muñiz E. (2000). Biología Celular. Síntesis: Madrid.
• Karp G. (2006). Biología Celular y Molecular. McGraw/Hill Interamericana: México.


HISTOLOGÍA ANIMAL:

• Boya J (2004). Atlas de Histología y Organografía Microscópica 2ª ed. Panamericana: Buenos Aires
• Fawcett DW. Jensh RP. (1999). Compendio de Histología Bloom-Fawcett. Interamericana/McGraw-Hill. México
• Kühnel W (2005). Atlas Color de Citología e Histología. 11ª ed. Panamericana: Buenos Aires
• Patt DI, Patt GR (1969). Comparative Vertebrate Histology. Harper & Row: New York
• Ross MH, Romrell LJ, Kaye A (2005). Histología. Texto y Atlas Color. 4ª ed. Panamericana: Buenos Aires
• Welsch U, Storch V (1976). Estudio Comparado de la Citología e Histología Animal. Urmo: Bilbao


HISTOLOGÍA ANIMAL:

• Esau K. (1985). Anatomía Vegetal. 3ª ed. Omega: Barcelona.
• Fahn. (1985). Anatomía Vegetal. 3ª ed. Pirámide: Madrid.
• Evert RF, Eichhorn Se. (2006). Esaus Plant Anatomy: Meristems, Cells, and Tissues of the Plant Body: their Structure, Function and Development. 3ª ed. Wiley Hoboker: New York.